转染时间：转染时间的长短也会影响转染效率。过长或过短的转染时间都可能导致转染效率降低。在阳离子脂质体Lipofectamine2000对PC12细胞的转染实验中，转染时间为6h时转染效率较高3。在优化宫颈*细胞系转染效率的实验中，Hela细胞系和Siha细胞系的比较好转染时间为24小时1。细胞接种密度：细胞接种密度也会影响转染效率。过高或过低的细胞接种密度都可能导致转染效率降低。在脂质体介导法转染肿瘤细胞效率的优化实验中，2×105接种密度时转染效率比较高9。在优化宫颈*细胞系转染效率的实验中，Hela细胞系和Siha细胞系的比较好接种密度分别为1.5×104（每孔24孔板）1。血清的有无：血清的存在可能会影响脂质体转染效率。一些实验表明，血清可能会降低转染效率，而另一些实验则表明血清对转染效率没有影响。在优化宫颈*细胞系转染效率的实验中，与含血清培养基相比，只有Siha细胞在无血清培养基中培养时在转染前获得了更高的转染效率（P＜0.01）1。在脂质体介导法转染肿瘤细胞效率的优化实验中，血清在本实验室条件下并不影响转染效率。基于病毒的转染，或者更具体地称为转导，涉及使用病毒载体将特定的核酸序列带入宿主细胞。中国台湾转染试剂试用

转染时间对奶牛子宫内膜原代上皮细胞转染的影响：在奶牛子宫内膜原代上皮细胞中，应用带有FAM标记的miRNA-185mimics为报告基因，检测两种不同转染试剂（LipofectamineRNAiMAX与Lipofectamine2000）在细胞接种不同时间后的转染效率33。结果显示，无论使用哪种转染试剂，12h的转染效率均极***高于18、24h，LipofectamineRNAiMAX各时间点的转染效率均极***高于Lipofectamine2000。并且，使用LipofectamineRNAiMAX作为转染试剂时，12h的荧光强度也比较高。这说明在奶牛子宫内膜原代上皮细胞中，选择合适的转染试剂和转染时间可以提高转染效率。同时，该研究未明确转染对细胞死亡的影响，但可以进一步研究不同转染条件下细胞的存活率，以确定在提高转染效率的同时降低细胞死亡的比较好条件。中国台湾转染试剂试用肌内注射脂质体不能引起强烈的毒性反应，这与肺内或静脉注射途径的情况不同。

转染试剂用量：转染试剂的用量是影响转染效率的重要因素之一。过多或过少的转染试剂都可能导致转染效率降低。在阳离子脂质体Lipofectamine2000对PC12细胞的转染实验中，发现lipo2000用量为5μL，DNA2μg，转染时间为6h时，PC12细胞转染率高达40%，且未影响细胞的正常分泌3。在脂质体介导法转染肿瘤细胞效率的优化实验中，研究了细胞接种密度、DNA用量、脂质体与DNA的比例等因素对脂质体转染效率的影响。结果表明，2-5次细胞传代，2×105接种密度、4μgDNA用量、2.5:1的脂质体与DNA比例、30min脂质体-DNA复合物形成时间以及6h细胞与复合物孵育时间，转染效率比较高9

基因***是阳离子聚合物作为转染剂的主要应用。通过携带质粒DNA、mRNA和siRNA，阳离子聚合物实现了与***相关的功能，如基因增强、基因抑制和基因组编辑。基因*****直接、或许也是**简单的策略是添加新的蛋白质编码基因。在当前**背景下，mRNA疫苗的大规模使用点燃了人们对核酸药物的浓厚兴趣。理论上，mRNA能够表达任何一种蛋白质;因此，除了作为疫苗预防传染病外，它还可以用于***其他疾病。目前的mRNA传递技术是基于脂质纳米颗粒平台，该技术的**掌握在少数几家公司手中。此外，由脂质纳米颗粒组成的mRNA疫苗应在**温下储存和运输，这严重限制了疫苗在高温或条件有限的地区的使用。因此，阳离子聚合物特别适合作为脂质体纳米颗粒的替代品。小RNA和质粒DNA的共转染可用于评估转染效率。

基于非病毒的转染方法可以进一步分为物理/机械方法和化学方法。常用的物理/机械转染方法包括电穿孔、声孔、磁***、基因显微注射和激光照射。电穿孔是一种常用的物理转染方法，利用电压瞬间增加细胞膜通透性，允许外来核酸进入。这种方法通常用于转染原代细胞、干细胞和B细胞系等难以转染的细胞。然而，使用高压可能导致细胞坏死、凋亡和长久性细胞损伤。超声辅助转染或超声穿孔涉及使用微泡技术在细胞膜上制造孔，以减轻遗传物质的转移，而激光照射辅助转染使用激光束在质膜上制造小孔，允许外来遗传物质进入。与电穿孔一样，超声穿孔和激光辅助转染也有破坏细胞膜和不可逆细胞死亡的风险。相比之下，磁辅助转染，或使用磁力来帮助转移外来遗传物质的磁转染，似乎对生物的破坏性较尽管效率较低，但对宿主细胞的破坏较小。另一方面，基因显微注射涉及使用特定的针刺穿细胞，将所需的核酸注射到宿主细胞的细胞核中。然而，这项技术需要经过专门训练的人员或机器人系统，他们可以高精度地执行程序，以防止细胞损伤，因此在基因***等临床应用中具有重要价值。与物理或机械转染方法相比，化学转染涉及使用专门设计的化学品或化合物来帮助将外源核酸转移到宿主细胞中。在选择合适的小RNA分子进行转染相关功能分析之前，应先确定其实验需要。中国台湾转染试剂试用

在转染中，DNA通常通过病毒或非病毒载体(如质粒)转运到宿主细胞中。中国台湾转染试剂试用

三、脂质体组成对转染效率的影响不同脂质组成的影响：研究发现脂质体的组成对不同类型细胞的转染效率有影响。例如，四种不同的DOTAP与DOPE重量比的脂质体配方对不同细胞系的转染效率不同。Huh7和AGS细胞的比较好脂质体组成是T1P0和T3P1；COS7细胞是T3P1和T1P1；A549细胞是T1P1和T1P36。脂质体结构的影响：脂质体复合物的形状会随着DOPE比例的增加从层状结构变为倒六角形结构，但在所有使用的细胞系中，特定结构在转染效率上没有明确的优势6。四、其他因素的影响血清的影响：对于某些细胞，血清的存在会影响转染效率。如Siha细胞在无血清培养基中培养时转染效率更高，而在Caco-2细胞的转染中，血清在本实验室条件下并不影响转染效率19。细胞传代次数：Caco-2细胞在2-5次细胞传代时转染效率比较高9。综上所述，脂质体转染对不同类型细胞的影响存在多方面的差异，包括转染效率、影响因素以及脂质体组成等。在进行脂质体转染实验时，需要根据不同的细胞类型优化转染条件，以获得比较好的转染效果。中国台湾转染试剂试用

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